爬虫類・両生類の安楽死
獣医学における安楽死の問題の概要
爬虫類を安楽死させる理由はたくさんあります。 さらに、このタスクを実行するには多くの方法があります。 ある目的に適した手法が、別の目的には適さない場合があります。 原因や方法を問わず、最も重要な点は、安楽死に対する人道的なアプローチです。
安楽死の適応症は、原則として、動物に苦痛を与える不治の病です。 また、この手順は、研究目的で、または農場での食用または産業目的での動物の屠殺の一部として実行されます。 この手順を実行するには多くの方法がありますが、それらの主な原則は、動物の痛みや不必要な苦しみを最小限に抑え、プロセスの速度や滑らかさを最小限に抑えることです.
安楽死の適応には、重傷、外科的疾患の手術不可能な段階、他の動物や人間に危険をもたらす感染症、やせ衰えたカメの昏睡などがあります。
動物の剖検が必要な場合があり、結果が記録されることがあるため、プロセスは適切に実行する必要があり、手順を誤って実行すると、疑いのある病気の病理解剖学的画像の特徴が大幅にぼやける可能性があります。
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| 頭頂眼からの脳への注射による安楽死 出典: Mader, 2005 | 麻酔後の断頭による安楽死 Source: Mader, 2005 |
頭頂 (第 2005) 眼を介した脳への注入の適用箇所 出典: D.Mader (XNUMX)
カメの脳は、「最後の手順」の後に動物が突然目覚める場合があるため、考慮に入れなければならない酸素欠乏の条件下でしばらくの間その活動を維持することができます。 無呼吸だけでは死に至らない。 一部の外国の著者は、安楽死に最適な薬物とともに、脊髄へのホルマリン溶液または麻酔薬の供給を助言し、カリウム塩とマグネシウム塩を心臓麻痺剤として使用することについても推測しました（心臓のポンプ機能を回復する可能性を減らすため）。覚醒を防ぐために。 カメが十分に長い時間息を止めることができるという理由から、カメの揮発性物質の吸入方法はお勧めできません。 Fry は著書 (1991 年) の中で、安楽死処置後もしばらくの間心臓が鼓動し続けていることを指摘しており、これにより、臨床例の死後分析を目的とした研究に必要な場合に血液を採取することが可能になります。 このことは、死亡を確認する際にも考慮に入れなければならない。
明らかに、安楽死下の一部の研究者は、道具の助けを借りて脳に物理的な損傷を与えることによって直接殺すことを意味しており、獣医学で採用されている手順は動物の準備として行われています.
米国では爬虫類の安楽死に関する多くのガイドラインが発行されていますが、クーパー博士のモノグラフには多くの専門家が依然として「ゴールド スタンダード」という称号を与えています。 前投薬のために、外国の獣医専門家はケタミンを使用します。これにより、主要な薬物を静脈に送達しやすくなり、動物のストレスも軽減され、安楽死の手続きに立ち会った場合に所有者が不必要な心配をするのを防ぐことができます。 次に、バルビツレートが使用されます。 一部の専門家は、麻酔薬の投与後に塩化カルシウムを使用します。 薬はさまざまな方法で投与されます：静脈内、いわゆる。 頭頂の目。 解決策は、体腔内または筋肉内に投与できます。 これらの投与経路も効果的であるという意見がありますが、効果ははるかに遅くなります. しかし、脱水症、低体温症、または病気 (実際には常に安楽死の適応にある) が薬物吸収の阻害要因となり得るという事実を考慮に入れる必要があります。 患者は吸入麻酔薬送達室（ハロセン、イソフルラン、セボフルラン）に入れることができますが、上記のように、一部の爬虫類は息を止めて嫌気性プロセスに入ることができるため、この手法は非常に長くなる可能性があります。無呼吸を経験する時間; これは主にワニと水生カメに当てはまります。
D.Mader (2005) によると、特に両生類は、TMS (トリカイン メタン スルホネート) と MS – 222 を使用して安楽死させられます。またはアルコ・セルツァー錠。 WaysonらによるTMS（トリカインメタンスルホン酸）による安楽死。 (1989) 最もストレスが少ない。 1976 mg/kg の用量で TMS の体腔内投与をお勧めします。 200% を超える濃度のエタノールの使用は、安楽死にも使用されます。 ペントバルビタールは、20 mg/kg の用量で体腔内に投与されます。 これは、組織の変化を引き起こし、病理像を大きく曖昧にするため、一部の病理学者には好まれません (Kevin M. Wright et Brent R. Whitaker、100)。
ヘビの場合、T 61 は心臓内に投与されます (必要に応じて筋肉内または体腔内に投与されます。また、薬物は肺に注入されます。有毒なヘビの場合、吸入薬またはクロロホルムを使用できない場合は容器を使用することをお勧めします。T 61 もトカゲやカメに役立った. 非常に大きなワニに関連して、他に方法がない場合、何人かの著者は頭の後ろでのショットについて言及しています. . 銃器, 問題の経済的側面からでも. したがって、特にこの問題についてコメントすることは控えます. 凍結は爬虫類の安楽死技術の中でもその場所を占めています. この方法は愛好家の間で広まっています. Cooper, Ewebank, and Rosenberg (1982)冷凍庫での凍結には長い時間がかかるという事実のために、患者がチャンバーに配置される前に準備ができていたとしても、この方法に対する人間の不信感を表明している.液体窒素で。 ただし、代替手段がない場合、この方法は動物を麻酔した後に使用されることがあります。
動物を麻酔に導入した後、ツールで脳を損傷する方法の XNUMX つ。 出典: McArthur S.、Wilkinson R.、Meyer J、2004 年。
断頭は確かに人道的な安楽死の方法ではありません。 クーパー等。 ( 1982 ) 爬虫類の脳は、脊髄の破裂後 1 時間まで痛みを知覚できる可能性があることを示しました。 多くの出版物は、鋭利な器具で脳を損傷することによって殺す方法を説明しています. 私たちの意見では、この方法は、頭頂眼への注射によって脳に溶液を供給するという形で行われます。 また、非人道的なのは、出血（低酸素症中の爬虫類と両生類の脳の一時的な生存能力については上記で述べました）、頭への強い打撃、および銃器の使用です。 ただし、大口径の武器から非常に大きな爬虫類の頭頂部の目に撃つ方法は、より人道的な操作を実行することが不可能であるため使用されます。
さまざまな安楽死技術の成功 (Mader によると、2005 年):
動物 | 深い 凍結 | 概要 化学物質 物質 | ソリューションへの没頭 | 吸入 | 物理的な 影響 |
トカゲ | <40 g | + | - | + | + |
ヘビ | <40 g | + | - | + | + |
カメ | <40 g | + | - | - | + |
ワニ | - | + | - | - | + |
両生類 | <40 g | + | + | - | + |
BSAVA の Exotic Animals (2002) を参照すると、西側で採用されている爬虫類の安楽死スキームを表にまとめることができます。
ステージ | 準備 | Доза | 投与経路 |
1 | ケタミン | 100-200 mg / kg | インチ/メートル |
2 | ペントバルビタール（ネンブタール） | 200 mg / kg | i/v |
3 | 脳の器械的破壊 | ||
Vasiliev DB はまた、表の最初の 2011 つの段階 (ネンブタールの供給とケタミンの予備投与) と小さなカメへのバルビツレートの心臓内投与の組み合わせについても説明しました。 彼の本タートルズで。 メンテナンス、病気、治療」（5）。 私たちは通常、爬虫類麻酔には通常の用量でプロポフォールを静脈内投与する（10～2ml/kg）か、非常に小さなトカゲやヘビにはクロロホルムチャンバーを使用し、続いて心臓内に（時には静脈内に）リドカイン2％（2014ml/kg）を投与します。 ）。 kg）。 すべての手順の後、死体は冷凍庫に入れられます（Kutorov、XNUMX）。
Kutorov SA、ノボシビルスク、2014
カタログ 1. ヴァシリエフ DB タートルズ。 内容、病気と治療。 – M .: 「Aquarium Print」、2011年。 2. Yarofke D.、Lande Yu. 爬虫類。 病気と治療。 – M. 「アクアリウム プリント」、2008 年。 3. BSAVA。 2002.エキゾチックペットのBSAVAマニュアル。 4. Mader D.、2005年。爬虫類の医学と外科。 サンダース・エルスヴィア。 5. McArthur S.、Wilkinson R.、Meyer J. 2004年。カメとカメの医学と手術。 ブラックウェル出版。 6. Wright K., Whitaker B. 2001. 両生類の医学と飼育下の飼育。 クリーガー出版。
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爬虫両生類学者の獣医師が不在の場合は、次の安楽死方法を使用できます。25 mg/kg の動物用麻酔薬 (Zoletil または Telazol) を IM で過剰摂取してから冷凍庫に入れます。
